Иммунные аспекты коллагенового обмена при туберкулезе
- Авторы: Тарасова Л.Г.1, Стрельцова Е.Н1
-
Учреждения:
- ГБОУ ВПО "Астраханская государственная медицинская академия" Минздрава РФ
- Выпуск: Том 21, № 2 (2015)
- Страницы: 51-55
- Раздел: Статьи
- Статья получена: 21.07.2020
- Статья опубликована: 15.04.2015
- URL: https://medjrf.com/0869-2106/article/view/38284
- DOI: https://doi.org/10.17816/rmj38284
- ID: 38284
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Казеозный некроз и пневмосклероз - начало и исход туберкулеза - являются крайними состояниями, отражающими коллагеновый обмен в организме больного. В обзоре представлены основные научные данные, характеризующие современные представления об иммунопатогенетической взаимосвязи синтеза и распада коллагена, цитокинов, коллагеназ (MMPs), их ингибиторов и аутоантител к ним при данном заболевании. Приведены особенности коллагенового гомеостаза при фармакорезистентном туберкулезе.
Ключевые слова
Полный текст
Появление в жидких средах организма любого инфекционного агента (в том числе микробактерий туберкулеза - МБТ) воспринимается сенсорным аппаратом мононуклеаров и нейтрофилов, которые высвобождают в ответ на это первичные медиаторы воспаления - ци- токины. Повышение их уровня способствует усилению синтеза острофазовых белков-реактантов, нарушению равновесия в свертывающей системе крови и развитию синдрома эндогенной интоксикации [1]. Исход инфицирования МБТ во многом определяется антими- кобактериальной активностью макрофагов, значительное влияние на которую оказывают T-лимфоциты 1-го типа, продуцирующие провоспалительные цитокины (ИЛ-2, Ил-12, ИФН-у, ФНО-а и др.). Так, в случае преимущественной инфильтрации очагов Th-1 прогноз заболевания будет благоприятным, а Th-2 - неблагоприятным [2]. При туберкулезе снижено процентное содержание T1-лимфоцитов на фоне неизменного ко - личества Х2-клеток. Кроме того, в связи с неэффективной презентацией антигена, ведущей к системному снижению количества CD4+- и CD8+-клеток, продуцирующих цитокины Ti-типа, и нарушению эффективного специфического T1-ответа, резко снижено число CD80-экспрессирующих моноцитов, а относительное количество Th1- и Tc1-клеток коррелирует с числом CD80+-моноцитов [3]. Повышенная продукция ТФР-В и ИЛ-10 T-клетками и моноцитами/макрофагами вызывает снижение антигенспецифического иммунного ответа вследствие смешения баланса в сторону Th2-хелперов. Подавляя продукцию T-лимфоцитов, эти цитокины индуцируют стойкую анергию антигенспецифических CD4+-клеток и нейтрофилов. ИЛ-8 и ИЛ-10 оказывают супрессорное воздействие на макрофаги [4]. ИЛ-18 способен индуцировать Th1 или Th2-лимфоциты в зависимости от иммунологической обстановки [5], ИЛ-4 в начальных стадиях воспаления оказывает противовоспалительное и иммуносупрессивное действие, при переходе его в хронический процесс - профибротическое [6, 7]. Казеозный некроз - неизбежный атрибут туберкулеза. Опытным путем установлено, что фибробласты в присутствии культуры вирулентных штаммов МБТ (H37Rv) усиленно синтезируют коллагеназы (матрикс- ные металлопротеазы - MMPs), тогда как авирулент- ные штаммы МБТ (H37Ra) стимулируют экспрессию коллагена [8]. Иными словами, МБТ способны запускать экспрессию MMPs [8, 9]. Различают 28 типов коллагенов - наиболее распространенных белков у млекопитающих (около 30% от всех белков в организме), составляющих основу соединительной ткани и обеспечивающих ее прочность [10, 11]. MMPs обладают уникальной способностью разрушать фибриллярные коллагены и некоторые другие компоненты матрикса при нейтральном pH среды, что объясняет их обязательное участие в механизме деструкции тканей [9, 12, 13]. Концентрация MMPs в биологических жидкостях человека различна, преобладает в плазме, ликворе или плевральной жидкости, завися в определенной мере от локализации патологического процесса и своего субстрата, которым могут являться фибробласты или макрофаги (MMP-1, MMP-7), нейтрофилы (MMP-8), гладкомышечные клетки сосудистой стенки (MMP-7) и т. д. МБТ индуцируют экспрессию MMP-1, MMP-7 и MMP-10 в моноцитах и MMP-1 и MMP-10 в мононуклеарах периферической крови [14- 16]. Продукция собственно MMPs может возрастать под воздействием цитокинов. Например, при экссудативном плеврите отмечается более высокое содержание ряда MMPs и их ингибиторов (MMP-1, TIMP-1 и TIMP-3), а также ИФН-у, ФНО-а и ИЛ-6 в плевральной жидкости по сравнению с плазмой крови, тогда как для MMP-7, MMP-8, MMP-9 характерна обратная зависимость [15]. Именно разобщенностью в содержании MMPs и их ингибиторов в экссудате при туберкулезном плеврите по сравнению с транссудатом, скопившимся в плевральной полости при сердечной недостаточности, избыточным содержанием MMP-1, MMP-2, MMP-8 и MMP-9 в плевральной жидкости при первом G. Hoheisel и соавт. [17] объясняют повышенное фиброзирование при специфическом процессе. МБТ (штаммы H37Rv или БЦЖ) индуцируют макрофаги, те в свою очередь секретаруют повышенное количество MMP-9 и несколько меньшее - MMP-2. Воздействуя на моноциты, МБТ избирательно активируют экспрессию MMP-1. Ингибиция ФНО-а и в меньшей степени ИЛ-8 существенно снижает продукцию данных MMPs. Разнонаправленно участвуют в регуляции коллагенового обмена и другие цитокины. Одни индуцируют синтез других, такая каскадность действия необходима для развития воспалительных и иммунных реакций [18, 19]. Они также могут выступать в качестве антагонистов по отношению друг к другу. Например, при увеличении концентрации ФНО-а происходит образование ИЛ-6, который может угнетать образование этого цитокина [20, 21]. ИФН-у, ИЛ-4 и ИЛ-10 подавляют экспрессию MMPs, индуцированную добавлением в культуру штаммов МБТ, но посредством разных механизмов. Так, ИФН-у увеличивает секрецию ФНО-а макрофагами, но снижает активность MMPs. ИЛ-4 и ИЛ-10, напротив, снижают в макрофагах содержание ФНО-а [22]. Под действием ряда цитокинов (ИФН, ФНО-а, ИЛ-1Р, ИЛ-6, ИЛ-10 и т. п.) активируется STAT3 (фактор транскрипции), что приводит к повышенному синтезу MMP [23]. СоМБТ-стимуляция приводит к значительному увеличению активности p38 митогенактивированной протеинкиназы, что при обязательном участии ФНО-а способствует секреции и экспрессии MMP-1, MMP-2, MMP-3 и MMP-9 [12, 24, 25]. ИФН-а, воздействуя на фактор транскрипции STAT1, подавляет каспаза-1- зависимую продукцию ИЛ-1В и индуцирует выработку ИЛ-10, который также снижает содержание ИЛ-1р. ИФН-а стимулирует образование ИФН-у, а ИФН-у также подавляет ИЛ-1Р [26]. Уровень MMP-9 при микобак- териальной инфекции регулируется в основном ФНО-а, ИЛ-18 и ИФН-у, причем синергизм ИФН-у и ИЛ-1Р повышает секрецию MMP [12, 22, 27]. ИФН-у посредством влияния на Sin3B, подавляет транскрипцию гена коллагена I типа [28]. Альвеолярные макрофаги человека в норме конститутивно экспрессируют PAR-1 (активированный проте- азой рецептор). Низкое или высокое содержание PAR- 1 в пораженной инфекционным агентом ткани связано с ферментативной активностью некоторых протеаз, в том числе MMP. По сути MCP-1 (макрофагальный белок хемоаттрактант) стимулирует экспрессию MMP-1, та активирует PAR-1 в моноцитах, что при стимуляции THP-1 (индуцированных моноцитов) инфекционным агентом (МБТ) приводит к экспрессии MCP-1, MMP-1, MMP-9. Ингибитором PAR-1 является SCH79797, который соответственно способен снижать уровень MCP-1, MMP-1, MMP-9 в клетках, инфицированных микобактериями [29]. Учитывая вышеизложенное, для коррекции иммунных нарушений при туберкулезе можно применять ингибиторы MMPs, например 1а, 25-дигидрокси- витамин D3 [12-29]. Таким образом, в формировании туберкулезной гранулемы участвуют практически все цитокины, а ка- скадность их действия регулирует воспалительные и иммунные процессы в организме больного. Между тем при туберкулезе среди прочих цитокинов ключевая роль принадлежит ФНО-а, который, как и MMPs, в туберкулезной гранулеме ассоциируется с тканевой деструкцией, причем решающее влияние на формирование гранулемы оказывает аутокринная и паракринная регуляция секреции MMPs. В настоящее время все шире проводятся исследования генома человека, причем не только крупных хромосомных мутаций, но и полиморфизма различных генов с целью выявить корреляционные взаимосвязи гапло- типов и аллелей с частотой развития определенных заболеваний и тяжестью их течения. Во фтизиатрии пристальный интерес ученых вызывают и генетические предпосылки особенностей метаболизма коллагена у больных туберкулезом. Выявления одного полиморфизма в одном гене обычно оказывается недостаточно для утверждении о его влиянии на синтез как цитокинов, так и коллагеновых белков [30, 31]. Однако установлено, что при сочетании аллелей -308G/-819T или -308G/-592A (ФНО-а/ИЛ-10) риск развития и тяжесть течения туберкулеза у человека достоверно снижаются [32]. Есть данные и о взаимосвязи одновременного наличия гапло- типов ИЛ-1В (-3954 C/T) и ИЛ-10 (-1082G/A) и восприимчивости к туберкулезу [33]. У пациентов, имеющих аллель -1607G (MMP-1), отмечена большая вероятность образования обширного легочного фиброза к концу 1-го года противотуберкулезной терапии. Возможно, это связано с возрастающей экспрессией MMP-1, что приводит к повышенному разрушению ткани с последующим фиброзом [29, 34, 35]. Содержание MMPs при туберкулезе легких возрастает, прямо коррелируя с тяжестью течения заболевания. В процессе эффективного лечения, на фоне кратковременного повышения уровня их ингибиторов (TIMP-1, TIMP-2) концентрация металлопротеаз начинает быстро снижаться [36]. У больных туберкулезом независимо от сроков лечения отмечается повышение и уровня про- воспалительных цитокинов (ИФН-у, ИЛ-1Р и ФНО-а). К 6-му месяцу эффективной терапии уровень ИНФ-у, ИЛ-1Р и ИЛ-10 снижается, а ФНО-а возрастает, причем наиболее значимы изменения содержания ИФН-у [37]. Наиболее высокий уровень ФНО-а и MMP-9 (экспрессию которого индуцирует трегалоза-6; 6-димиколат - гликолипид клеточной стенки МБТ) характерен для тяжелого течения туберкулеза независимо от конкретного штамма МБТ [38, 39]. При туберкулезе, вызванном полирезистентными МБТ и МБТ с множественной лекарственной устойчивостью, наблюдаются сочетание резкого повышения титра антител к МБТ с низкими концентрациями циркулирующих иммунных комплексов, а также повышенная концентрация IgA, IgM, IgG (достоверно различие по концентрации IgM). Резко угнетается продукция ИЛ-2 (угнетение активности Th1) и ИЛ-8 (уменьшается индукция хемотаксиса и дегрануляции нейтрофилов, а также количества внеклеточных катионных белков лактофер- рина и миелопероксидазы, которые при лекарственночувствительных формах МБТ, напротив, увеличиваются). При нарастании лекарственной устойчивости и степени жизнеспособности микобактерии иммунный ответ развивается преимущественно по гуморальному типу, тогда как клеточный иммунитет, играющий основную протективную роль при туберкулезе, угнетается [40, 41]. Снижение изначально повышенного уровня ИФН-у, ФНО-а и ИЛ-8 при фармакорезистентном туберкулезе наступает позднее и более плавно, нежели при лекарственно-чувствительном [42]. Среди штаммов МБТ с МЛУ отмечено абсолютное превалирование генотипа Beijing [43]. Добавление в культуру лимфоцитов липидного и белкового микобактериальных антигенов (штаммов Beijing) приводит к значительному снижению выработки цитокинов независимо от варианта туберкулезного процесса, а лица с определенным полиморфизмом гена ИЛ-10 (-1082AA) подвержены повышенному риску развития устойчивости к противотуберкулезным препаратам [32, 44]. Для туберкулеза легких, вызванного штаммами МБТ, не обладающими лекарственной устойчивостью к противотуберкулезным препаратам, характерно истощение иммунной системы, происходящее в процессе развития заболевания за счет реакции иммуно- компетентных клеток в ответ на внедрение возбудителя. Фармакорезистентному заболеванию свойственна исходная иммунологическая толерантность, индуцированная возбудителем, с сохранением резерва реактивности клеток иммунной системы [45]. Аутоиммунные процессы являются необходимым компонентом поддержания гомеостаза [46]. В организме человека постоянно циркулируют в малых количествах аутоантитела, являющиеся частным механизмом иммунорегуляции. Их основное предназначение - нейтрализация различных продуктов метаболизма. Избыточное, как и недостаточное, образование аутоантител приводит к нарушению гомеостаза [46, 47]. Аутоантитела к ФНО-а классов G, M, A и субклассов IgG определяются и у больных туберкулезом, и у здоровых лиц, причем достоверно значимо содержание только аутоантител субклассов G. По-видимому, при патологии аутоантитела к ФНО-а препятствуют генерализации процесса и соответственно образованию некроза. Для туберкулеза легких характерен дисбаланс между уровнем аутоантител, характеризующим гуморальный иммунитет, и содержанием собственно ФНО-а, отражающим функциональную активность макрофагов. Высокое содержание ФНО-а и низкий уровень антител способствуют тяжелому течению болезни и являются негативным прогностическим признаком [48]. При метаболизме коллагена также образуются типоспецифические аутоантитела, участвующие в процессе элиминации компонентов соединительной ткани. Их уровень отражает состояние иммунной системы, указывая в условиях патологии на степень вовлеченности в процесс определенных типов коллагена [46, 47, 49]. Коллаген III типа обладает более слабыми иммуногенными свойствами по сравнению с I, II, IV и V типами [46]. При выраженном иммунопатологическом процессе у больных туберкулезом легких на фоне резкого возрастания активности MMP-8 отмечается снижение содержания проколлаген-Ш-Ы-концевого пропептида [50]. У больных туберкулезом при длительно сохраняющемся высоком титре антитела к коллагену могут выступать в качестве патогенетического фактора, становясь причиной пролонгации воспалительных явлений в легочной ткани, приводящих впоследствии к склеротическим изменениям. Высокий титр антител, стабильно определяемый на протяжении всего курса антибактериальной терапии, является показателем активности туберкулезного процесса, "готовности" к избыточному развитию соединительной ткани в легких [51]. Таким образом, помимо генетически заложенной способности к повышенному синтезу или распаду коллагеновых белков (благодаря полиморфизму генов MCP-1, MMPs, цитокинов), микобактериальная инфекция способствует как непосредственно, так и опосредованно через каскад реакций цитокинов повышенной экспрессии коллагеназ. В условиях пониженной активности TIMP (ингибиторов коллагеназ) нарастают деструктивные изменения в тканях. При метаболизме коллагена образуются типоспецифические аутоантитела, участвующие в процессе элиминации компонентов соединительной ткани, и чем более выражен коллагеногенез, тем выше уровень аутоантител. Для фармакорезистентного туберкулеза характерна исходная иммунологическая толерантность, индуцированная возбудителем, с сохранением резерва реактивности клеток иммунной системы, что выражается длительной цитокинемией, в свою очередь способствующей повышенной экспрессии MMPs.×
Об авторах
Людмила Геннадьевна Тарасова
ГБОУ ВПО "Астраханская государственная медицинская академия" Минздрава РФ
Email: tarasova_lg@list.ru
канд. мед. наук, доцент кафедры фтизиатрии 414000, Астрахань, Россия
Е. Н Стрельцова
ГБОУ ВПО "Астраханская государственная медицинская академия" Минздрава РФ414000, Астрахань, Россия
Список литературы
- Каминская Г.О., Абдуллаев Р.Ю., Мартынова Е.В., Серебряная Б.А., Комиссарова О.Г. Синдром системного воспалительного ответа при туберкулезе легких. Туберкулез и болезни легких. 2009; 9: 40-7.
- Schluger N.W., Rom W.N. The host immune response to tuberculosis. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1998; 157(3): 679-91.
- Темчура О.В., Сенюков В.В., Пронкина Н.В., Романов В.В., Петренко Т.Н., Кожевников B.C. Ассоциирование уменьшения количества Т-клеток 1-го типа в периферической крови больных туберкулезом легких со снижением экспрессии костимуляторных CD80-молекул на моноцитах. Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2007; 2: 25-8.
- Тюлькова Т.Е., Чугаев Ю.П., Кашуба Э.А. Особенности функционирования иммунной системы при туберкулезной инфекции. Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2008; 11: 48-55.
- Han М., Yue J., Lian Y.Y., Zhao Y.L., Wang H.X., Liu L.R. Relationship between single nucleotide polymorphism of interleukin-18 and susceptibility to pulmonarytuberculosis in the Chinese Han population. Microbiol. Immunol. 2011; 55(6): 388-93.
- Hemandez-Pando R., Aguilar D., Hernandez M.L., Orozco H., Rook G. Pulmonary tuberculosis in BALB c mice with non-functional IL-4 genes: changes in the inflammatory effects of TNF-alpha and in the regulation of fibrosis. Eur. J. Immunol. 2004; 34(1): 174-83.
- Huaux F., Liu Т., McGarry B. Ullenbruch М., Phan S. H. Dual roles of IL-4 in lung injury and fibrosis. J. Immunol. 2003; 170(4): 2083- 92.
- Gonzalez-Avila G., Sandoval C., Herrera M.T., Ruiz V., Sommer B., Sada E. et al. Mycobacterium tuberculosis effects on fibroblast collagen metabolism. Respiration. 2009; 77(2): 195-202.
- Salgame P. MMPs in tuberculosis: granuloma creators and tissue destroyers. J. Clin. Invest. 2011; 121(5): 1686-8.
- Gordon M.K., Hahn R.A. Collagens. Cell Tissue Res. 2010; 339(1): 247-57.
- Ricard-Blum S. The collagen family. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2011; 3(1): a004978.
- Elkington P.T., Ugarte-Gil C.A., Friedland J.S. Matrix metalloproteinases in tuberculosis. Eur. Respir. J. 2011; 38(2): 456-64.
- Elkington P., Shiomi Т., Breen R., Nuttall R.K., Ugarte-Gil C.A., Walker N.F. et al. MMP-1 drives immunopathology in human tuberculosis and transgenic mice. J. Clin. Invest. 2011; 121(5): 1827-33.
- Coussens A., Timms P.M., Boucher B.J., Venton T.R., Ashcroft A.T., Skolimowska K.H. et al. 1alpha,25-dihydroxyvitamin D3 inhibits matrix metalloproteinases induced by Mycobacterium tuberculosis infection. Immunology. 2009; 127(4): 539-48.
- Sundararajan S., Babu S., Das S.D. Comparison of localized versus systemic levels of Matrix metalloproteinases (MMPs), its tissue inhibitors (TIMPs) and cytokines in tuberculous and non-tuberculous pleuritis patients. Hum. Immunol. 2012; 73(10): 985-91.
- Tadokera R., Meintjes G.A., Wilkinson K.A., Skolimowska K.H., Walker N., Friedland J.S. et al. Matrix metalloproteinases and tissue damage in HIV-tuberculosis immune reconstitution inflammatory syndrome. Eur. J. Immunol. 2014; 44(1): 127-36.
- Hoheisel G., Sack U., Hui D.S., Huse K., Chan K.S., Chan K.K. et al. Occurrence of matrix metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinases in tuberculous pleuritis. Tuberculosis (Edinb.). 2001; 81(3): 203-9.
- Price N.M., Gilman R.H., Uddin J., Recavarren S., Friedland J.S. Unopposed matrix metalloproteinase-9 expression in human tuberculous granuloma and the role of TNF-alpha-dependent monocyte networks. J. Immunol. 2003; 171(10): 5579-86.
- Wright K.M., Friedland J.S. Regulation of monocyte chemokine and MMP-9 secretion by proinflammatory cytokines in tuberculous osteomyelitis. J. Leukoc. Biol. 2004; 75(6): 1086-92.
- Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Мешкова P.Л. Клиническая иммунология и аллергология с основами общей иммунологии. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2012.
- Черноусова Л.Н., Смирнова Т.Г., Андреевская С.Н., Афанасьева Е.Г., Тимофеев А.В. Уровень цитокинов при инфицировании ex vivo макрофагов мыши микобактериями туберкулезного комплекса. Туберкулез и болезни легких. 2009; 8: 46-8.
- Quiding-Jarbrink М., Smith D.A., Bancroft G.J. Production of matrix metalloproteinases in response to mycobacterial infection. Infect Immun. 2001; 69(9): 5661-70.
- O'Kane C.M., Elkington P.T., Jones M.D., Caviedes L., Tovar М., Gilman R.H. et al. STAT3, p38 МАРК, and NF-kappaB drive unopposed monocyte-dependent fibroblast MMP-1 secretion intuberculosis. Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 2010; 43(4): 465-74.
- Green J.A., Dholakia S., Janczar K., Ong C.W., Moores R., Fry J. et al. Mycobacterium tuberculosis-infected human monocytes down-regulate microglial MMP-2 secretion in CNStuberculosis via TNFа, NFkB, p38 and caspase 8 dependent pathways. J. Neuroinflammation. 2011; 8: 46.
- Green J.A., Rand L., Moores R., Dholakia S., Pezas Т., Elkington P.T. et al. In an in vitro model of human tuberculosis, monocyte-microglial networks regulate matrix metalloproteinase-1 and -3 gene expression and secretion via a p38 mitogen activated protein kinasedependent pathway. J. Neuroinflammadon. 2013; 10: 107.
- Elkington P.T., Green J.A., Emerson J.E., Lopez-Pascua L.D., Boyle J.J., O'Kane C.M. et al. Synergistic up-regulation of epithelial cell matrix metalloproteinase-9 secretion in tuberculosis. Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 2007; 7(4): 431-7.
- Ma J., Yang B., Yu S., Zhang Y., Zhang X., Lao S. et al. Tuberculosis antigen-induced expression of IFN-а in tuberculosis patients inhibits production of IL-lbeta. FASEB J. 2014; 28(7): 3238-48.
- Harris J.E., Femandez-Vilaseca М., Elkington P.T., Homcastle D.E., Graeber M.B., Friedland J.S. IFNgamma synergizes with IL-1beta to up-regulate MMP-9 secretion in a cellular model of central nervous systemtuberculosis. FASEB J. 2007; 21(2): 356-65.
- Weng X., Cheng X., Wu X., Xu H., Fang М., Xu Y. Sin3B mediates collagen type I gene repression by interferon gamma in vascular smooth muscle cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2014; 447(2): 263-70.
- Поспелов А.Л., Авербах М.М., Губкина М.Ф., Поспелов Л.Е. Влияние полиморфизма генов IFN-y и IL-10 на синтез цитокинов при туберкулезе легких у детей и подростков. Туберкулез и болезни легких. 2011; 3: 52-6.
- Ganachari М., Guio H., Zhao N., Flores-Villanueva P.O. Host geneencoded severe lung ТВ: from genes to the potential pathways. Genes Immun. 2012; 13(8): 605-20.
- Zhang J., Chen Y., Nie X.B., Wu W.H., Zhang H., Zhang M. et al. Interleukin-10 polymorphisms and tuberculosis susceptibility: a metaanalysis. Int. J. Tuberc. Lung Dis. 2011; 15(5): 594-601.
- Ben-Selma W., Harizi H., Boukadida J. MCP-1 -2518 A/G functional polymorphism is associated with increased susceptibility to active pulmonarytuberculosis in Tunisian patients. Mol. Biol. Rep. 2011; 38(8): 5413-9.
- Meenakshi P., Ramya S., Shruthi Т., Lavanya J., Mohammed H.H., Mohammed S.A. et al. Association of IL-1beta+3954 C/T and IL-10-1082 G/A cytokine gene polymorphisms with susceptibility to tuberculosis. Scand. J. Immunol. 2013; 78(1): 92-7.
- Wang C.H., Lin H.C., Lin S.M., Huang C.D., Liu C.Y., Huang K.H. et al. MMP-1(-1607G) polymorphism as a risk factor for fibrosis after pulmonary tuberculosis in Taiwan. Int. J. Tuberc. Lung Dis. 2010; 14(5): 627-34.
- Ganachari М., Ruiz-Morales J.A., Gomez de la Torre Pretell J.C., Dinh J., Granados J., Flores-Villanueva P.O. Joint effect of MCP-1 genotype GG and MMP-1 genotype 2G/2G increases the likelihood of developing pulmonarytuberculosis in BCG-vaccinated individuals. PLoS One. 2010 2; 5(1): e8881.
- Ugarte-Gil C.A., Elkington P., Gilman R.H., Coronel J., Tezera L.B., Bernabe-Ortiz A. et al. Induced sputum MMP-1, -3 & -8 concentrations during treatment of tuberculosis. PLoS One. 2013; 8(4): e61333.
- Поспелов А.Л., Авербах М.М., Губкина М.Ф. Уровень синтеза IFN-y, TNF-а, IL-1beta и IL-10 на разных этапах лечения туберкулеза у детей и подростков. Туберкулез и болезни легких. 2011; 8: 36-40.
- Yorsangsukkamol J., Chaiprasert A., Palaga Т., Prammananan Т., Faksri K., Palittapongampim P. et al. Apoptosis, production of MMP9, VEGF, TNF-alpha and intracellular growth of M. tuberculosis for different genotypes and different pks5 l genes. Asian Рас. J. Allergy Immunol. 2011; 29(3): 240-51.
- Sakamoto K., Kim M.J., Rhoades E.R., Allavena R.E., Ehrt S., Wainwright H. C. et al. Mycobacterial trehalose dimycolate reprograms macrophage global gene expression and activates matrix metalloproteinases. Infect. Immun. 2013; 81(3): 764-76.
- Новицкий B.B., Стрелис A.K., Уразова О.И., Воронкова О.В., Ткаченко С.Б., Синицына В.А. и др. Особенности функциональной активности лимфоцитов крови у больных туберкулезом легких. Иммунология. 2006; 27(2): 76-9.
- Сахарова И.Я., Ариэль Б.М., Кноринг Б.Е., Скворцова Л.А., Васильева Г.Ю., Вишневский Б.И. и др. Некоторые закономерности иммунного ответа у больных туберкулезом легких с лекарственноустойчивыми штаммами микобактерий. Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2008; 12: 22-7.
- Шкарин А.В., Белоусов С.С., Аникина О.А. Уровень цитокинов в плазме крови у больных активным инфильтративным туберкулезом легких. Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2008; 8: 34-7.
- Маркелов Ю.М. Клинико-эпидемиологические особенности туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью микобактерий и причины его распространении в Карелии. Туберкулез и болезни легких. 2011; 8: 11-7.
- Хасанова P.P., Воронкова О.В., Уразова О.И., Новицкий В.В., Стрелис А.К., Колосова А.Е. и др. Роль цитокинов в модуляции субпопуляционного состава лимфоцитов крови у больных туберкулезом легких. Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2008; 3: 31-5.
- Серебрякова В.А., Васильева О.А., Уразова О.И., Новицкий В.В., Воронкова О.В., Стрелис А.К. и др. Модулирующее влияние изониазида и рифампицина на секрецию цитокинов in vitro при туберкулезе легких. Туберкулез и болезни легких. 2009; 7: 58-64.
- Ягода А.В., Гладких Н.Н. Аутоиммунные аспекты нарушения коллагенового гомеостаза при недифференцированной дисплазии соединительной ткани. Медицинская иммунология. 2007; 9(1): 61-8.
- Покровский В.И., ред. Руководство по клинической иммунологии и аллергологии, иммуногенетике, иммунофармакологии (для врачей общей практики). М.: Триада; 2005.
- Аутеншлюс А.И., Соснина А.В., Поддубная Л.В., Зырянова Т.В., Лопатникова Ю.А., Сенников С.В. Классы и субклассы антител к ФНО-а у больных туберкулезом легких*. Туберкулез и болезни легких. 2010; 11: 57-60.
- Capossela S., Schlafli P., Bertolo A., Janner Т., Stadler B.M., Potzel T. et al. Degenerated human intervertebral discs contain autoantibodies against extracellular matrix proteins. Eur. Cell Mater. 2014; 27: 251-63.
- Seddon J., Kasprowicz V., Walker N.F., Yuen H.M., Sunpath H., Tezera L. et al. Procollagen III N-terminal propeptide and desmosine are released by matrix destruction in pulmonary tuberculosis. J. Infect. Dis. 2013; 208(10): 1571-9.
- Тарасова Л.Г., Стрельцова Е.Н. Репарация легочной ткани при туберкулезе. Элби-СПб; 2010.
Дополнительные файлы
