Aprotinin, a protease inhibitor, is a new alternative in the treatment of influenza



Cite item

Full Text

Abstract

Full Text

Возникновение новой пандемии, вызванной новой разновидностью вируса гриппа H1N1, так называемого свиного вируса H1N1pdm, высветило проблему недостаточного арсенала химиотерапевтических средств и необходимости создания новых классов противовирусных лекарств. В настоящее время в арсенале противовирусных химиотерапевтических средств имеются два класса соединений ингибиторы вирусной нейраминидазы (осельтами-вир и занамивир) и вирусного белка ионных каналов M2 (амантадин и ремантадин) [56, 61]. Однако, на современном этапе значительная часть популяции вирусов гриппа H1N1, H3N2, H1N1pdm и H5N1, циркулирующих среди людей, уже приобрела устойчивость к препаратам обоих классов (данные Центра по контролю заболеваний (CDC), Атланта, США); [http://www.cdc.gov/flu/professionals/ antivirals/antiviral-drug-resistance.htm]. Это обстоятельство усиливает необходимость создания новых альтернативных химиопрепаратов для борьбы с вирусом гриппа. Научные усилия концентрируются на двух подходах, которые нацелены либо на мишени самого вируса (вирусонаправленные средства), либо на клеточные факторы, которые необходимы для вирусной репликации и патогенеза (клеточно-направленные средства). Из группы клеточнонаправленных соединений можно выделить апротинин, ингибитор протеаз, который эффективно суппрессирует трипсиноподобные протеазы, вовлекаемые в расщепление вирусного белка гемагглютинина (НА) и активацию вируса гриппа в инфицированном организме. Это вещество имеет давнюю медицинскую практику применения в качестве средства для лечения панкреатита и постоперационных кровотечений [28, 75]. Имеется ряд коммерческих препаратов апротинина, таких как Trasylol™ (“Baer AG”, Германия), GordoxTM (“Gedeon Richter”, Венгрия), Ingiprol™ (Институт кровезаменителей, Москва, Россия), Contrycal™ (“AWD”, Германия). В настоящем сообщении рассматривается новое назначение апротинина как ингибитора протеаз в качестве противогриппозного средства, которое оказывает бинарное — противовирусное и противовоспалительное — химиотерапевтическое действие, и анализируются достоинства и предосторожности его применения у людей. Механизм противовирусного и противовоспалительного действия апротинина — поливалентного ингибитора трипсиноподобных протеаз Хорошо известно, что вирусу гриппа для приобретения инфекционности необходимо протеолитическое разрезание гемагглютинина НА (белка, формирующего шипы на поверхности вириона) на два фрагмента НА1 (55 кД) и НА2 (20 кД) [46, 49]. Это явление, получившее название протеолитической активации вируса гриппа, 1Работа выполнена при финансовой поддержке РФФИ (грант 10-04 01824). осуществляется специфическими протеазами организма-хозяина (рис. 1). В результате разрезания гемагглютинина в субъединице НА2 высвобождается N-концевой пептид (пептид слияния), который способен делать поры при слиянии вирусной и клеточных липидных мембран и давать возможность выхода вирусной РНК в составе ри-бонуклеопротеида в клетку, инициируя инфекционный процесс [61]. Разрезание белка HA происходит в строго определенном месте молекулы — протеолитическом сайте (см. рис. 1). Среди множества вирусных штаммов существуют два типа этого сайта. У всех эпидемических вирусов гриппа человека субтипов Н1-Н3 и умеренно вирулентных птичьих вирусов Н1-Н16 в этом сайте содержится только один остаток аргинина, так называемый монорагинино-вый сайт. У высоковирулентных вирусов птиц двух субтипов Н5 и Н7, включая вирус "птичьего" гриппа Н5Ш человека, в сайте протеолиза НА содержится несколько остатков аргинина, мотив Arg-X-Lys/Arg-Arg, так называемый полиаргининовый сайт [31]. Разрезание данных двух сайтов осуществляют различные протеазы: либо трипсиноподобные, либо фуриновые протеазы у моно- и поли-аргининовых вирусов соответственно [31]. Две указанные группы вирусов (эпидемические вирусы Н1-Н3 человека и высоковирулентные Н5 и Н7 птиц) различаются не только по природе активирующих протеаз, но и по субклеточной локализации, где осуществляется нарезание их гемагглю-тининов. У вирусов субтипов Н5 и Н7 расщепление происходит во внутренней зоне клетки-мишени в аппарате Голь-джи [31], тогда как у эпидемических моноаргининовых вирусов Н1-Н3 человека разрезание НА0 осуществляется на клеточной периферии — в области плазматической мембраны или на самой клеточной поверхности [88]. Известно также, что разрезание НА0 у вирусов гриппа человека могут осуществлять протеазы некоторых бактерий [24, 69, 74]. Такое синергидное усиление вируса гриппа бактериальными протеазами может иметь место при смешанной вирусно-бактериальной инфекции, которая нередко развивается при гриппе[9, 69, 74]. Для вирусов с моноаргининовым сайтом, к которым относятся все эпидемические вирусы человека Н1-Н3, включая "свиной" пандемический вирус H1N1pdm, в качестве эффекторных рассматривается ряд трипсиноподобных сериновых протеаз, таких как триптаза Клара, плазмин, миниплазмин, калликреин, трипсиноподобная протеаза респираторного тракта человека (HAT), эпите-лиазин (TMPRSS2; трансмембранная протеаза, серин 2), трансмембранная протеаза, серин 4 (TMPRSS4), которые способны активировать вирус гриппа в клеточных культурах [19, 20, 21, 44, 48, 57, 69, 81]. Однако, какая из этих протеаз связана с активацией вируса гриппа и развитием заболевания в респираторном тракте человека, пока не установлено, но наиболее вероятными кандидатами представляются три последние протеазы [19-21]. Важно отметить, что активация некоторых вирусных штаммов вируса 52 Российский медицинский журнал гриппа может осуществляться плазмином в клетках мозга и специфически способствовать нейровирулентности таких штаммов [50, 72]. Оказалось существенным, что все перечисленные протеазы (кандидаты на роль вирусной активирующей протеазы) высокочувствительны к апро-тинину — природному поливалентному ингибитору протеаз из легких крупного рогатого скота [7, 21, 25, 44, 45, 57, 81, 86, 87]. Эти наблюдения имеют важное медицинское значение, поскольку создают молекулярную основу для химиотерапевтического использования апротинина в качестве противогриппозного средства. Подтверждение вирусингибирующего эффекта апро-тинина в клеточных культурах, зараженных эпидемическими вирусами гриппа [19, 21, 84, 87, 88], а также пандемическим вирусом гриппа H1N1pdm [7, 88], послужило импульсом для проверки его активности на животных. Было показано, что апротинин заметно снижает патологию в легких и спасает от гибели мышей, инфицированных вирусом гриппа А или В. Эффективным оказалось как парентеральное [82—84], так и ингаляционное [58] применение апротинина. Положительное лечебное и ви-русингибирующее действие низкомолекулярных ингибиторов протеаз, таких как апротинин, леупептин, камостат, было подтверждено в опытах на животных и другими авторами [33, 39, 73]. В результате анализа полученных данных была выдвинута концепция о том, что патогенез гриппозной инфекции в респираторном тракте формируется по механизму "порочного круга" (рис. 2) [1, 84]. Согласно этой концепции, вирус инфицирует респираторный эпителий и в результате размножения стимулирует протеазы хозяина, которые, с одной стороны, служат пусковым элементом воспалительных калликреин-, плазмин- и тромбинзави-симых каскадов, а с другой — амплифицируют активацию вновь синтезированного вируса, усиливая распространение инфекции [6]. В ходе гриппозной инфекции дополнительно происходит снижение концентрации естественных ингибиторов протеаз [10, 18, 35, 36—67], которые в норме поддерживают протеолитический баланс в респираторном тракте. Такой дефицит ингибиторов усугубляет патогенез инфекционного процесса. Вполне очевидно, что апротинин может оказывать двоякое действие, заключающееся в подавлении активации вируса и торможении рас- NH2 Эффекторная протеаза , Пептид ^ слияния * Якорный пептид НА1 (55kD) NH2 РЦ W Протеолиз Г\ РЦ шщ V ) У s COON НА2 (20kD) COON НАО (75kD) Рис. 1. Схема протеолиза гемагглютинина (НА) вируса гриппа А человека. Вирусный гемагглютинин (НА) синтезируется в клеточном шероховатом ретикулуме в виде гликозилированного белка с мол. массой 75 кД. После синтеза белок транспортируется на плазматическую мембрану клетки и в зоне которой он разрезается трипсиноподобной протеазой хозяина на два фрагмента: НА1 (55 кД) и НА2 (20 кД), сохраняющих дисульфидную связь. Протеолиз НА приводит к освобождению пептида слияния на N-конце НА2, который выполняет функцию внедрения вируса в клетку-мишень. Прикрепление вируса к клеточным рецепторам осуществляется рецепторным центром (РЦ) в субъединице НА1. пространения инфекции, а также в аттенуации протеоли-тических каскадных реакций, лежащих в основе системного воспаления в организме и в очаге инфекции (см. рис. 2). Достоинства и некоторые предосторожности терапевтического применения апротинина у людей Данные об эффективности апротинина в культуре клеток и на животных позволили приступить к его испытанию у людей при гриппе и других ОРВИ. Поскольку вирусные инфекции, включая грипп, локализуются преимущественно в верхних отделах дыхательного тракта, наиболее рациональной лечебной формой представлялась ингаляция аэрозоля апротинина. Проведенные испытания показали, что трехразовые ежедневные ингаляции у пациентов с сезонным гриппом и ОРВИ, вызванными парамиксовирусом и аденовирусами, давали Первичный очаг инфекции Вторичные очаги инфекции и. Л. U. ц. U. Протеазы сГк) Протеазы Воспаление Воспаление Рис. 2. Схема патогенеза гриппозной инфекции и мишени апротинина. Вирус гриппа заражает чувствительные клетки, протеазы которых активируют вновь синтезированные вирионы. Активированные вирионы заражают новые клетки, распространяя процесс инфекции. При этом вирусная инфекция индуцирует протеазы хозяина, которые усиливают активацию и размножение вируса и провоцируют воспалительные реакции через плазмин-, калликреин- и тромбинзависимые протеолитические каскады. Таким образом формируется порочный круг: вирус индуцирует протеазы хозяина, которые активируют репродукцию вируса и запускают развитие воспаления. Апротинин, снижая уровень протеаз, подавляет размножение вируса и понижает уровень патологического воспаления. № 2, 2012 53 заметный терапевтический эффект (рис. 3). Клинический лечебный эффект состоял в заметном укорочении продолжительности основных симптомов болезни: головной боли, боли в горле, першения, кашля, более ранней выписки из стационара и т.д. Важно заметить, что, во-первых, все пациенты хорошо переносили ингаляции апротинина и, во-вторых, у пациентов не было отмечено каких-либо побочных реакций [4, 5, 85]. В полном согласии с нашими данными заметное лечебное действие и хорошая переносимость препарата обнаруживались у больных с хронической бронхолегочной болезнью при лечении ингаляциями аэрозольного апротинина [65]. Терапевтическое действие апротинина при гриппе и ОРВИ складывается из двух главных механизмов: противовирусного и противовоспалительного. Противовирусный механизм апротинина обусловлен ингибированием протеазы, которая вызывает расщепление вирусного НА и активацию вируса, о чем речь шла выше. Противовоспалительный механизм апротинина имеет поливалентный характер и обусловлен ингибированием целого ряда медиаторов воспаления. Основные воспалительные мишени апротинина суммированы в таблице. Как видно, противовоспалительный потенциал апротинина складывается из воздействия на такие медиаторы, как калликре-ин, плазмин, тромбин, оксидные радикалы, простазин, активируемый протеазами ионно-канальный рецептор 1 и т. д. Таким образом, он способен нормализовать ряд воспалительных процессов, таких как трансмиграция лейкоцитов и трансплазмоз калликреина, плазмина, тромбина из кровотока в пораженные ткани, отек тканей, оксидный стресс, мукоцилиарный клиренс респираторного эпителия, суперпродукцию кининов, активность комплемента (см. таблицу). Хорошо известно, что перечисленные факторы воспаления усугубляют патогенез гриппозной инфекции [8—10, 14, 36]. Из этого логично следует, что введение апротинина будет оказывать благотворное влияние, поскольку будет ограничивать распространение инфекции и ослаблять развитие воспалительной патологии, а также способствовать ее скорейшему разрешению. Два лечебных подхода по использованию апротини-на при гриппе и ОРВИ представляются рациональными. При легкой и средней тяжести гриппа, когда инфекция локализована в носоглотке и верхних трахеобронхиальных отделах, наиболее оптимальными представляются аэрозольные формы апротинина для ингаляций или инсуффляций через нос или рот, в зависимости от доминирующей локализации очага. Основываясь на наших клинических наблюдениях [4, 5, 85], для такого лечения Ед рекомендуется доза 1—3 • 103 КИЕ/пациент в день. Компактный ручной ингалятор, содержащий в качестве активного вещества апротинин, дает оптимальную возможность индивидуального лечения инфекционных больных, поскольку позволяет предотвратить кроссконтаминацию между пациентами с различными инфекциями. Такой карманный ингалятор, в котором применена озонсбере-гающая пропеллентная технология Modulite™ [30], создан в России (под торговой маркой АэрусТМ) и разрешен для применения у людей при сезонном гриппе, включая "свиной" грипп H1N1pdm, и других ОРВИ. Второй лечебный подход состоит в применении внутривенных инфузий апротинина при тяжелых формах гриппа, когда имеются поражение глубоких отделов респираторного тракта и признаки системной патологии и интоксикации. Это также касается угрожающего "птичьего" гриппа H5N1, когда смертность превышает 50% [17], и церебральных форм, вызванных нейровирулентными штаммами вируса гриппа [29, 52]. Указанная лечебная форма базируется на уже разрешенном внутривенном применении апротинина. Известно, что до 10% апроти-нина от введенной внутривенно дозы поступает в ткани бронхолегочной системы или мозга [41, 79]. С учетом такой диспозиции можно рекомендовать дозу 0,5—3,0 • 105 КИЕ/пациент/день, которая будет поддерживать достаточную терапевтическую концентрацию препарата в легких и других важных органах (например, в мозге) для подавления репродукции вируса и снижения системного воспаления. Безусловно, необходимы дальнейшие клинические исследования, чтобы оптимизировать дозировку при различных формах гриппа и ОРВИ. Ряд предосторожностей следует иметь в виду при применении апротинина у людей для лечения гриппа и ОРВИ. Хорошая переносимость апротинина и очень низкий уровень общей и локальной токсичности [2, 3, 28, 75] не исключают возможности развития некоторых побочных эффектов. В последние несколько лет появились сообщения о том, что массивное внутривенное применение апротинина при операциях на сердце у больных с сердечной патологией может иметь несколько повышенный риск послеоперационной смерти по сравнению с кровеостанавливающими средствами на основе лизина [27]. Побочные эффекты со стороны почек, сердца, мозга ассоциировались у части пациентов при использовании массивных внутривенных доз апротинина (начальное введение 2 • 106 КИЕ и последующая поддерживающая доза 5 • 105 КИЕ в час) [53, 70], но такая взаимосвязь была уже незначимой при снижении дозы в два раза [53]. Од- Рис. 3. Уменьшение продолжительности болезни при лечении гриппа и ОРВИ апротинином. Пациенты в период сезонного подъема заболеваемости гриппом и ОРВИ, вызванного преимущественно вирусами гриппа и частично адено-и парамиксовирусами, получали ингаляции апротинина (столбцы с двойной штриховкой) 3 раза в день в течение 4—5 дней, начиная со 2-го дня от момента появления симптомов заболевания. В качестве плацебо (столбцы с косой штриховкой) получали содовые щелочные ингаляции без апротинина [4, 5, 85]. Продолжительность симптомов определяли с момента начала лечения до их исчезновения (ось ординат). Разница в продолжительности всех симптомов между плацебо и экспериментальной группой с апротинином была достоверной (р < 0,05) [85]. 1 — головная боль; 2 — тошнота; 3 — слабость; 4 — боль в горле; 5 — гиперемия зева; 6 — склерит или конъюнктивит; 7 — лихорадка; 8 — першение в горле; 9 — насморк или заложенность носа; 10 — кашель. 54 Российский медицинский журнал Противовоспалительное действие апротинина Мишени апротинина (источники литературы) Физиологические эффекты Плазмин [9, 13, 62, 67, 80] Калликреин [79, 80, 82] Тромбоцитарный протеазный рецептор 1 [44, 66] Простазин/эпителиальный натриевый канал [26, 64] Окислительный стресс [22, 39] Адгезивные рецепторы и активность лейкоцитов [12, 33, 36, 65] Факторы комплемента 3А и 5А [11, 42, 72] Ингибирует фибринолиз, предотвращает геморрагии, но не препятствует растворению тромбов в мелких сосудах, тормозит плазминзависимую трансмиграцию бактерий в ткани, подавляет активацию калликреина и продукцию брадикинина Подавляет продукцию воспалительных кининов, предотвращает капиллярную текучесть, ослабляет кининзависимый трансплазмоз сывороточных протеаз в ткани Предотвращает тромбининдуцируемую дисфункцию тромбоцитов и агрегацию, понижает сосудистый тромбоз, предохраняет рецепторы тромбоцитов Предотвращает активацию натриевых каналов и нормализует мукоцилиарную функцию и водный баланс респираторного эпителия Снижает концентрацию оксидных радикалов и ослабляет их токсичность для тканей Понижает экспрессию воспалительных адгезивных интегринов (CD11b), дегрануляцию и миграцию нейтрофилов в ткани, подавляет образование и секрецию TNF-a, IL-6, IL-8, эластазы, способствует усилению образования IL-10 Понижает плазминрегулируемое образование активных компонентов комплемента 3А и 5А нако пока нет единого мнения и продолжаются дебаты относительно важности такой ассоциации угрожающих рисков с применением апротинина у пациентов с выраженной сердечной и сосудистой патологией [38, 54, 59]. Важно подчеркнуть, что дозы, применяемые у хирургических больных, в 100—1000 раз выше, чем таковые, необходимые для применения у больных гриппом и ОРВИ. Используемый в настоящее время в медицинской практике апротинин выделяется из легких крупного рогатого скота, и это несет угрозу возникновения аллергических эффектов. Процент таких осложнений при первичном применении апротинина невелик и не превышает 0,1%, однако он может повышаться до 2,7% при многократных аппликациях апротинина [16, 51]. Крайне редко апротинин дает тяжелые анафилактические реакции [77]. Следует подчеркнуть, что указанные побочные реакции апротинина развивались при массивных внутривенных дозах 1—5 • 106 КИЕ. Будут или нет, такие реакции возникать при 100-кратных и более низких дозах у пациентов с гриппом, пока неизвестно. Однако важно заметить, что широко используемый в хирургической практике фибриновый клей, содержащий апротинин и накладываемый на серозные оболочки [23], практически не дает побочных аллергических осложнений (всего зарегистрировано 5 случаев на 1 млн применений [15]). В наших клинических наблюдениях около 300 пациентов получали ингаляции апротинина, отмечалась хорошая переносимость и ни в одном случае не наблюдалось побочных реакций [4, 5, 85]. В ближайшей перспективе для снижения подобных аллергических рисков может применяться апротинин человека, технология производства которого уже хорошо отработана [55, 71]. Интересно, что апротинин человека отличается от апротинина быка только по двум аминокислотам в 17-м и 18-м положениях (Arg17 -> Lys17 и Ile18 -> МеЦ8)вблизи его активного центра [71]. Применение апротинина человека в силу физиологической компле-ментарности будет способствовать повышению его клинической эффективности в организме людей, в том числе и при лечении вирусных инфекций.
×

About the authors

O. P. Zhirnov

Email: zhirnov@inbox.ru

N. A. Malyshev

References

  1. Жирнов О. П. // Вопр. вирусол. — 1983. — № 4. — С. 9—21.
  2. Жирнов О. П., Овчаренко А. В., Голяндо П. Б. и др. // Антибиотики и химиотер. — 1994. — Т. 39, № 5. — С. 25—32.
  3. Жирнов О. П., Овчаренко А. В., Голяндо П. Б. и др. // Антибиотики и химиотер. — 1994. — Т. 39, № 9—10. — С. 54—58.
  4. Жирнов О. П., Киржнер Л. С., Овчаренко А. В., Малышев Н. А. // Тер. арх. — 1995. — № 6. — С. 38—42.
  5. Жирнов О. П., Киржнер Л. С., Овчаренко А. В., Малышев Н. А. // Вестник РАМН. — 1996. — № 5. — С. 26—31.
  6. Жирнов О. П., Поярков С. В., Малышев Н. А. // Пульмонология. — 2009. — № 3. — С. 109—118.
  7. Жирнов О. П., Klenk H. D. // Вопр. вирусол. — 2011. — № 2.
  8. Akaike T., Noguchi Y., Ijiri S. et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 1996. — Vol. 93, № 6. — P. 2448—2453.
  9. Akaike T., Molla A., Ando M. et al. // J. Virol. — 1989. — Vol. 63, № 5. — P. 2252—2259.
  10. Akaike T., Ando M., Oda T. // J. Clin. Invest. — 1990. — Vol. 85, № 3. — P. 739—745.
  11. Amara U., Rittirsch D., Flierl M. et al. // Adv. Exp. Med. Biol. — 2008. — Vol. 632. — P. 71—79.
  12. Asimakopoulos G., Lidington E. A., Mason J. et al. // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. — 2001. — Vol. 122, № 1. — P. 123—128.
  13. Attali C., Durmort C., Vernet T., Di Guilmi A. M. // Infect. Immun. — 2008. — Vol. 76, № 11. — P. 5350—5356.
  14. Barnett J. K., Cruse L. W., Proud D. // Am. Rev. Respir. Dis. — 1990. — Vol. 142, № 1. — P. 162—166.
  15. Beierlein W., Scheule A. M., Antoniadis G., Braun C., Schosser R. // Transfusion. — 2000. — Vol. 40, № 3. — P. 302—305.
  16. Beirlein W., Scheule A. M., Dietrich W., Ziemer G. // Ann. Thorac. Surg. — 2005. — Vol. 79. — P. 741—748.
  17. Beigel J. H., Farrar J., Han A. M. et al. // N. Engl. J. Med. — 2005. — Vol. 353, № 13. — P. 1374—1385.
  18. Beppu Y., Imamura Y., Tashiro M. et al. // J. Biochem. — 1997. — Vol. 121. — P. 309—316.
  19. Bertram S., Glowacka I., Blazejewska P. et al. // J. Virol. — 2010. — Vol. 84, № 19. — P. 10016—10025.
  20. Böttcher E., Matrosovich T., Beyerle M. et al. // J. Virol. — 2006. — Vol. 80, № 19. — P. 9896—9898.
  21. Böttcher-Friebertshäuser E., Freuer C., Sielaff F. et al. // J. Virol. 2010. — Vol. 84, № 11. — P. 5605—5614.
  22. Bruda N. L., Hurlbert B. J., Hill G. E. // Clin. Sci. — 1998. — Vol. 94, № 5. — P. 505—509.
  23. Busuttil R. W. // J. Am. Coll. Surg. — 2003. — Vol. 197, № 6. — P. 1021-1028.
  24. Callan R. J., Hartmann F. A., West S. E., Hinshaw V. S. // J. Virol. — 1997. — Vol. 71, № 10. — P. 7579—7585.
  25. Chaipan C., Kobasa D., Bertram S. et al. // J Virol. 2009. — Vol. 83, № 7. — P. 3200-3211.
  26. Coote K., Atherton-Watson H. C., Sugar R. et al. // J. Pharmacol. Exp. Ther. — 2009. — Vol. 329, № 2. — P. 764—774.
  27. Fergusson D. A., Hébert P. C., Mazer C. D. et al. // N. Engl. J. Med. — 2008. — Vol. 358, № 22. — P. 2319-2331.
  28. Fritz H., Wunderer G. // Arzneim. - Forsch. — 1983. — Vol. 33, № 4. — P. 479—494.
  29. Fujimoto S., Kobayashi M., Uemura O. et al. // Lancet. — 1998. — Vol. 352, № 9131. — P. 873—875.
  30. Ganderton D., Lewis D., Davies R. et al. // Respir. Med. — 2002. — Vol. 96 (suppl. D). — P. S3—S8.
  31. Garten W., Klenk H. D. // Monogr. Virol. — Basel, 2008. — Vol. 27. — P. 156—167.
  32. Gilliland H. E., Armstrong M. A., Uprichard S. et al. // Anaesthesia. 1999. — Vol. 54, № 5. — P. 427—433.
  33. Harig F., Feyrer R., Mahmoud F O. et al. // Thorac. Cardiovasc. Surg. — 1999. — Vol. 47, № 2. — P. 111—118.
  34. Hayashi T., Hotta H., Itoh M., Homma M. // J Gen Virol. 1991. — Vol. 72, pt 4. — P. 979—982.
  35. Heimburger N. New York, 1975. — P. 367—386.
  36. Hennet T., Peterhans E., Stocker R. // J. Gen. Virol. — 1992. — Vol. 73, pt 1. — P. 39—46.
  37. Hill G. E., Robbins R. A. // Anesth. Analg. — 1997. — Vol. 84, № 6. — P. 1198—1202.
  38. Hogue C. W., London M. J. // Anesth. Analg. — 2006. — Vol. 103, № 5. — P. 1067—1070.
  39. Hosoya M., Matsuyama S., Baba M. et al. // Antimicrob. Agents Chemother. — 1992. — Vol. 36, № 7. — P. 1432—1436.
  40. Huber-Lang M., Sarma J. V., Zetoune F S. et al. // Nat Med. — 2006. — Vol. 12, № 6. — P. 682—687.
  41. Kaller H., Patzschke K., Wegner L. A., Horster F. A. // Eur. J. Drug Metabol. Pharmacokinet. — 1978. — Vol. 3, № 2. — P. 79—85.
  42. Khan T. A., Bianchi C., Voisine P. et al. // Ann. Thorac. Surg. — 2005. — Vol. 79, № 5. — P. 1545—1550.
  43. Khatchikian D., Orlich M., Rott R. // Nature. — 1989. — Vol. 340, № 6229. — P. 156—157.
  44. Kido H., Yokogoshi Y., Sakai K. et al. // J. Biol. Chem. — 1992.— Vol. 267. P. 13573—13579.
  45. Kido H., Sakai K., Kishino Y., Tashiro M. // FEBS Lett. — 1993. — Vol. 322. — P. 115—119.
  46. Klenk H. D., Rott R., Orlich M., Blodorn J. // Virology. — 1975. — Vol. 68. — P. 426—439.
  47. Krowarsch D., Zakrzewska M., Smalas A. O., Otlewski J. // Protein Pept. Lett. — 2005. — Vol. 12, № 5. — P. 403—407.
  48. Lazarowitz S. G., Goldberg A. R., Choppin P. W. // Virology. — 1973. — Vol. 56. — P. 172—180.
  49. Lazarowitz S. G., Choppin P. W. // Virology. — 1975. — Vol. 68. — P. 440—454.
  50. Le Bouder F., Lina B., Rimmelzwaan G. F., Riteau B. // J. Gen. Virol. — 2010. — Vol. 91, pt 11. — P. 2753—2761
  51. Levy J. H., Adkinson N. F. // Anesth. Analg. 2008. — Vol. 106. — P. 392—403.
  52. Lyon J. B., Remigio C., Milligan T., Deline C. // Pediatr. Radiol. — 2010. — Vol. 40, № 2. — P. 200—205.
  53. Mangano D. T., Tudor I. C., Dietzel C. // N. Engl. J. Med. — 2006. — Vol. 354, № 4. — P. 353—365.
  54. McEvoy M. D., Reeves S. T., Reves J. G., Spinale F G. // Anesth Analg. — 2007. — Vol. 105, № 4. — P. 949—962.
  55. Meta A., Nakatake H., Imamura T. et al. // Protein Expr. Purif. — 2009. — Vol. 66, № 1. — P. 22—27.
  56. Moscona A. // N. Engl. J. Med. — 2009. — Vol. 360, № 10. — P. 953—956.
  57. Murakami M., Towatari T., Ohuchi M. et al. // Eur. J. Biochem. — 2001. — Vol. 268. — P. 2847—2855.
  58. Ovcharenko A. V, Zhirnov O. P. // Antiviral. Res. — 1994. — Vol. 23. — P. 107—118.
  59. Pasquali S. K., Hall M., Li J. S. et al. // Ann. Thorac. Surg. — 2010. — Vol. 90, № 1. — P. 14—21.
  60. Passero C. J., Hughey R. P., Kleyman T. R. // Curr. Opin. Nephrol. Hypertens. — 2010. — Vol. 19, № 1. — P. 13—19.
  61. Pinto L. H., Lamb R. A. // J. Biol. Chem. — 2006. — Vol. 281, № 14. — P. 8997—9000.
  62. Planes C., Caughey G. H. // Top. Dev. Biol. — 2007. — Vol. 78. — P. 23—46.
  63. Poullis M., Manning R., Laffan M. et al. // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. — 2000. — Vol. 120, № 2. — P. 370—378.
  64. Pruefer D., Makowski J., Dahm M. et al. // Ann. Thorac. Surg. — 2003. — Vol. 75, № 1. — P. 210—215.
  65. Rasche B., Marcic I., Ulmer W. T. // Arzn. Forsch. — 1975. — Vol. 25, № 1. — P. 110—116.
  66. Ray M. J., Marsh N. A. // Thromb. Haemost. — 1997. — Vol. 78, № 3. — P. 1021—1026.
  67. Reichert R., Hochstrasser K., Werle E. // Klin. Wschr. — 1971. — Vol. 49, № 22. — P. 1234—1236.
  68. Sarma V. J., Huber-Lang M., Ward P. A. // Autoimmunity. — 2006. — Vol. 39, № 5. — P. 387—394.
  69. Scheiblauer H., Reinacher M., Tashiro M., Rott R. // J. Infect. Dis. — 1992. — Vol. 166, № 4. — P. 783—791.
  70. Shaw A. D., Stafford-Smith M., White W. D. et al. // N. Engl. J. Med. — 2008. — Vol. 358, № 8. — P. 784—793.
  71. Sun X., Tse L. V., Ferguson A. D., Whittaker G. R. // J. Virol. — 2010. — Vol. 84, № 17. — P. 8683—8690.
  72. Sun Z., Lu W., Jiang A. et al. // Protein Expr. Purif. — 2009. — Vol. 65, № 2. — P. 238—243.
  73. Tashiro M., Klenk H. D., Rott R. // J. Gen. Virol. — 1987. — Vol. 68, pt 7. — P. 2039—2041.
  74. Tashiro M., Ciborowski P., Reinacher M. et al. // Virology. — 1987. — Vol. 157, № 2. — P. 421—430.
  75. Trautschold I., Werle E., Zickgraf-Rudel G. // Biochem. Pharmacol. — 1967. — Vol. 16. P. 59—72.
  76. Vusicevic Z., Suskevic T. // Ann. Pharmacother. — 1997. — Vol. 31. — P. 429—432.
  77. Wachtfogel Y. T., Kucich U., Hack C. E. et al. // J Thorac. Cardiovasc. Surg. — 1993. — Vol. 106, № 1. — P. 1—9.
  78. Wachtfogel Y. T., Hack C. E., Nuijens J. H. et al. // Am. J. Physiol. — 1995. — Vol. 268, № 3, pt 2. — P. H1352—H1357.
  79. Werle E., Trautschold I., Haendle H., Fritz H. // Ann. N. Y. Acad. Sci. — 1968. — Vol. 146, № 2. — P. 464—478.
  80. Yayama K., Kunimatsu N., Teranishi Y. // Biochim. Biophys. Acta. — 2003. — Vol. 1593, № 2—3. — P. 231—238.
  81. Zhirnov O. P., Ovcharenko A. V., Bukrinskaya A. G. // J. Gen. Virol. — 1982. — Vol. 63. — P. 469—474.
  82. Zhirnov O. P., Ovcharenko A. V., Bukrinskaya A. G. // Arch Virol. — 1982. — Vol. 73, № 3—4. — P. 263—272.
  83. Zhirnov O. P., Ovcharenko A. V., Bukrinskaya A. G. // J. Gen. Virol. — 1984. — Vol. 65. — P. 191—196.
  84. Zhirnov O. P. // J. Med. Virol. — 1987. — Vol. 21. — P. 161—167.
  85. Zhirnov O. P., Kirzhner L. S., Ovcharenko A. V., Malyshev N. A. // Antiinfective Drug and Chemother. — 1996. — Vol. 14. — P. 209— 216.
  86. Zhirnov O. P., Ikizler M. R., Wright P. // J. Virol. — 2002. — Vol. 76. — P. 8682—8689.
  87. Zhirnov O. P., Klenk H. D. // Virology. — 2003. — Vol. 313. — P. 198—202.
  88. Zhirnov O. P., Matrosovich T. Y., Matrosovich M. N., Klenk H. D. // Antiviral. Chem. Chemother. — 2011. — Vol. 21. — P. 169—174.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2012 Eco-Vector



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия  ПИ № ФС 77 - 86296 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80632 от 15.03.2021 г
.



This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies