Biology BulletinBiology BulletinИзвестия Российской академии наук. Серия биологическая1026-34703034-5367The Russian Academy of Sciences64774710.31857/S1026347023700178MXSXVUКРАТКИЕ СООБЩЕНИЯКРАТКИЕ СООБЩЕНИЯEffects of Ellagotannins on Intestinal Peptidase Activity in Rainbow TroutВоздействие эллаготанинов на активность пептидаз кишечника радужной форелиMikryakovD. V.МикряковД. В.ns_tarleva@ibiw.ruTarlevaA. F.ТарлеваА. Ф.ns_tarleva@ibiw.ruPapanin Institute for Вiology of Inland Waters RASФГБУН Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН01072023444444828012025Copyright ©; 2023, Д.В. Микряков, А.Ф. ТарлеваCopyright ©; 2023, Д.В. Микряков, А.Ф. Тарлева2023Д.В. Микряков, А.Ф. ТарлеваД.В. Микряков, А.Ф. Тарлеваhttps://medjrf.com/1026-3470/article/view/647747

The effect of ellagotannins on the activity of peptidases of the intestinal mucosa and chyme of trout was studied. Experimental groups of fish were fed with an additive based on ellagitannins (with an active substance content of 0.38, 0.76 and 1.14 g/kg of food). Sampling was carried out in 8 individuals from each group before the experiment, at 15, 30, 45 and 60 days. The study showed that ellagotannins, has a stimulating effect on the activity of peptidases. The maximum increase in the enzymatic activity in the experimental groups compared with the control group was recorded on day 45 of the experiment. A more significant increase in the activity of peptidases of the intestinal mucosa compared with chyme was established. It is concluded that ellagotannins stimulate the initial stage of cleavage of protein components of food.

Изучено влияние эллаготанинов на активность пептидаз слизистой оболочки кишечника и химуса форели. Опытным группам рыб давали корм с добавкой на основе эллаготанинов (с содержанием активного вещества 0.38, 0.76 и 1.14 г/кг корма). Отбор проб проводили у 8 особей из каждой группы перед началом эксперимента, на 15, 30, 45 и 60 сутки. Исследование показало, что эллаготанины, оказывают стимулирующий эффект на активность пептидаз. Максимальное увеличение ферментативной активности в опытных группах по сравнению с контрольной зафиксировано на 45 сут эксперимента. Установлено более значительное увеличение активности пептидаз слизистой оболочки кишечника, по сравнению с химусом. Сделан вывод, что эллаготанины стимулируют первоначальный этап расщепления белковых компонентов пищи.

troutellagotanninspeptidasesintestinal mucosachymeфорельэллаготаниныпептидазыслизистая оболочка кишечникахимусАнтонов В.К. Химия протеолиза. М.: Наука, 1983. 367 с.Дегтярик С.М., Гребнева Е.И., Слободницкая Г.В., Бенецкая Н.А., Максимьюк Е.В., Беспалый А.В. Влияние растительных экстрактов на возбудителей аэромонозов и псевдомонозов рыб // Вопросы рыбного хозяйства Беларуси. 2016. № 32. С. 249–261.Зеков Д.Д., Ульянов М.В., Микряков Д.В., Суворова Т.А. Определение эффективных норм введения кормовой добавки Акватан в рацион радужной форели с биологической оценкой влияния на рыбохозяйственные показатели // Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2021. № 11. С. 66–77.Кузьмина В.В. Процессы экзотрофии у рыб. Организация. Регуляция. Адаптации. М.: Полиграф-Плюс. 2015. 260 с.Кузьмина В.В. Физиолого-биохимические основы экзотрофии рыб. М. Наука. 2005. 300 с.Кузьмина В.В. Процессы пищеварения у рыб. Новые факты и гипотезы. Ярославль: Филигрань, 2018. 300 с.Уголев А.М., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.Шатуновский М.И. Экологические закономерности обмена веществ морских рыб. М.: Наука, 1980. 288 с.Шульман Г.Е. Физиолого-биохимические особенности годовых циклов рыб. М.: Пищевая промышленность, 1972. 368 с.Abolfathi M., Hajimoradloo A., Ghorbani R., Zamani A. Compensatory growth in juvenile roach Rutilus caspicus: effect of starvation and re-feeding on growth and digestive surface area // J. Fish Biol. 2012. V. 81. № 6. P. 1880–1890.Aly S.M., El Naggar G.O., Mohamed M.F., Mohamed W.E. Effect of garlic, echinacea, organic green and vet-yeast on survival, weigth gain, and bacterial challenge of overwintered Nile tilapia fry (Orechromis niloticus) // J. Appl. Aquacult. 2010. V. 22. № 3. P. 210–215.Caruso G., Denaro M.G., Caruso R., De Pasquale F., Genovese L., Maricchiolo G. Changes in digestive enzyme activities of red porgy Pagrus pagrus during a fasting–refeeding experiment // Fish Physiol Biochem. 2014. V. 40. № 5. P. 1373–1382.Coccia E., Siano F., Grazia Volpe M., Varricchio E., Tufan Eroldogan O., Paolucci M. Chestnut. Shell Extract modulates immune parameters in the rainbow trout Oncorhynchus mykiss // Fishes. 2019. V. 4(1). P. 18. https://doi.org/10.3390/fishes4010018Harikrishnan R., Chellam B., Subramanian D., Yong-Gun M., Man-Chul K., Ju-Sang K., Moon-Soo H. Effect of plant active compounds on immune response and disease resistance in Cirrhina mrigala infected with fungal fish pathogen, Aphanomyces invadans // Aquacult. Res. 2009. V. 40. № 10. P. 1170–1181.Immanuel G., Uma R.P., Iyapparaj P., Citarasu T., Punitha Peter S.M., Michael Babu M., Palavesam A. Dietary medicinal plant extracts improve growth, immune activity and survival of tilapia Oreochromis mossambicus // J. Fish Biol. 2009. V. 74. № 7. P. 1462–1475.Kuz’mina V.V., Skvortsova E.G., Shalygin M.V. Role of peptidases of the enteric microbiota and prey in temperature adaptations of the digestive system in boreal carnivorous fish // Inland Water Biol. 2019. V. 12. № 2. P. 231–239.Ramasamy H., Chellam B., Subramanian D., Yong-Gun M., Man-Chul K., Ju-Sang K., Moon-Soo H. Effect of plant active compounds on immune response and disease resistance in Cirrhina mrigala infected with fungal fish pathogen, Aphanomyces invadans // Aquacult. Res. 2009. V. 40. № 10. P. 1170–1181.Nya E.J., Dawood Z., Austin B. The garlic component, allicin, prevents disease caused by Aeromonas hydrophila in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) // J. Fish Diseases. 2010. V.33. № 4. P. 293–300.Nya E.J., Austin B. Use of garlic, Allium sativum, to control Aeromonas hydrophila infection in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) // J. Fish Diseases. 2009. V. 32. № 11. P. 963–970.Sahu S., Das B.K., Mishra B.K., Pradhan J., Sarangi N. Effect of Allium sativum on the immunity and survival of Labeo rohita infected with Aeromonas hydrophila // J. Appl. Ichthyol. 2007. V. 23. № 1. P. 80–86.Sahu S., Das B.K., Mishra B.K., Pradhan J., Samal S.K., Sarangi N. Effect of dietary Curcuma longa on enzymatic and immunological profiles of rohu, Labeo rohita (Ham.), infected with Aeromonas hydrophila // Aquacult. Res. 2008. V. 39. № 16. P. 1720–1730.Mişe Yonar S. Growth performance, haematological changes, immune response, antioxidant activity and disease resistance in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed diet supplemented with ellagic acid // Fish and Shellfish Immunology. 2019. V. 95. P. 391–398.Tkachenko H., Buyun L., Kasiyan O., Terech–Majewska E., Osadowski Z. The antibacterial activity of the ethanolic leaf extract of Ficus Pumilla L. (MORACEAE) against Fich Bacterial Patogens // Scientific J. Far East State Technical Fisheries University. 2018. № 2. V. 45. P. 20–30.Won Kyoung M. Effect of the residuum extract of Siberian ginseng Eleutherococcus senticosus on non-specific immunity in olive flounder Paralichthys olivaceus / M. Won Kyoung, Kim Pyong K., Lee Sung H., Park Soo I. // Fish. Sci. 2008. V. 74. № 3. P. 635–641.