Biology BulletinBiology BulletinИзвестия Российской академии наук. Серия биологическая1026-34703034-5367The Russian Academy of Sciences64778110.31857/S1026347024040022VIJDMOBIOCHEMISTRYБИОХИМИЯResearch ArticleEvaluation of the pharmacological efficiency of the lipid extract from the tunic of the marine hydrobiont Halocynthia aurantium (Pallas, 1774)Оценка фармакологической эффективности липидного экстракта из туники морского гидробионта Halocynthia aurantium (Pallas, 1774)KushnerovaN. F.КушнероваН. Ф.
Russian Federation
natasha50@mail.ruFomenkoS. E.ФоменкоС. Е.
Russian Federation
natasha50@mail.ruSpryginV. G.СпрыгинВ. Г.
Russian Federation
natasha50@mail.ruMomotT. V.МомотТ. В.
Russian Federation
natasha50@mail.ruDrugovaE. S.ДруговаЕ. С.
Russian Federation
natasha50@mail.ruLesnikovaL. N.ЛесниковаЛ. Н.
Russian Federation
natasha50@mail.ruMerzlyakovV. Y.МерзляковВ. Ю.
Russian Federation
natasha50@mail.ruV.I. Il’ichev Pacific Oceanological Institute. FEB RASТихоокеанский океанологический институт им. В.И. Ильичева ДВО РАНI.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University) of MH RFПервый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова МЗ РФ (Сеченовский Университет)26102024444145028012025Copyright ©; 2024, Russian Academy of SciencesCopyright ©; 2024, Российская академия наук2024Russian Academy of SciencesРоссийская академия наукhttps://medjrf.com/1026-3470/article/view/647781

It was studied effect of the lipid extract isolated from the tunic of the marine hydrobiont Halocynthia aurantium. It was evaluated its administration during hypothermia, hyperthermia, muscle load and the introduction of hexenal as well as its embryotoxic and teratogenic effects The impact of stress (vertical fixation of rats by the dorsal neck fold) was accompanied by an increase in plasma levels of total lipids, total cholesterol, cholesterol/phospholipid ratios and a decrease in total phospholipids, as well as by a change in the quantitative characteristics of classes of neutral and phospholipid. It was carried out a correction of the developed changes by a lipid extract of ascidia and a commercial reference preparation “Omega-3”. The lipid extract of H. aurantium showed a higher efficiency in restoring the lipid composition of the blood plasma under stress impact compared to the preparation “Omega-3” due to a wider range of neutral and phospholipid classes, polyunsaturated fatty acids of the n-3 and n-6 families. The tunica of ascidian can be used as a raw material for obtaining preparations with stress-protector and lipid-correcting properties.

Изучены тератогенный и эмбриотоксический эффекты экстракта из туники асцидии Halocynthia aurantium, а также его применение в условиях, переохлаждения, перегревания, мышечной нагрузки, введении гексенала и вертикальной фиксации за дорсальную шейную складку. Стресс-вертикальная фиксация крыс сопровождалась увеличением в плазме крови уровня общих липидов, общего холестерина, коэффициента холестерин/фосфолипиды и снижением общих фосфолипидов, а также изменением количественных характеристик классов нейтральных и фосфолипидов. Проведена коррекция полученных изменений липидным экстрактом асцидии и коммерческим препаратом сравнения Омега-3. Липидный экстракт H. aurantium показал более высокую эффективность в восстановлении липидного состава плазмы крови при стрессе по сравнению с препаратом Омега-3 за счет более широкого спектра нейтральных и фосфолипидных классов, полиненасыщенных жирных кислот семейств n-3 и n-6. Туника асцидии может использоваться как сырье для получения препаратов со стресспротекторными и липидкоррегирующими свойствами.

Halocynthia aurantiumlipid extracthypothermiahyperthermiamuscle loadembryotoxicityteratogenicitystressblood plasmalipidsHalocynthia aurantiumлипидный экстрактпереохлаждениеперегреваниемышечная нагрузкаэмбриотоксичностьтератогенностьстрессплазма кровилипидыПравительство РФGovernment of the Russian Federation121-21500052-9Артюков А. А., Попов А. М., Цыбульский А. В., Кривошапко О. Н., Полякова Н. В. Фармакологическая активность эхинохрома А отдельно и в составе БАД «Тимарин» // Биомед. химия. 2012. Т. 58. № 3. С. 281–290. https://doi.org/10.18097/pbmc20125803281Кейтс М. Техника липидологии. – Москва: Мир, 1975. 324 с.Кривошапко О. А., Попов А. М. Лечебные и профилактические свойства липидов и антиоксидантов, выделенных из морских гидробионтов // Вопр. питания. 2011. № 2. С. 4–8.Кушнерова Н. Ф., Спрыгин В. Г., Фоменко С. Е., Рахманин Ю. А. Влияние стресса на состояние липидного и углеводного обмена печени, профилактика // Гиг. и сан. 2005. № 5. С. 17–21.Кушнерова Н. Ф., Фоменко С. Е., Спрыгин В. Г., Другова Е. С., Момот Т. В., Лесникова Л. Н., Мерзляков В. Ю. Влияние липидного комплекса из морской зеленой водоросли Ulva lactuca Linnaeus, 1753 на биохимические показатели плазмы крови и печени при экспериментальной дислипидемии // Биол. моря. 2022. Т. 48. № 2. С. 123–132. https://doi.org/10.31857/S0134347522020073Матросова И. В., Лескова С. Е. Некоторые черты репродуктивной биологии асцидии пурпурной Halocynthia aurantium (Рallas) // Науч. труды Дальрыбвтуза. 2016. № 39. С. 1–2.Миронов А. Н. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть первая. М.: Гриф и К. 2012.Момот Т. В., Кушнерова Н. Ф., Рахманин Ю. А. Профилактика нарушения биохимических показателей в крови крыс при экспериментальном стрессе // Гиг. и сан. 2016. № 7. С. 678–681. https://doi.org/10.18821/0016-9900-2016-95-7-678-681Моторя Е. С., Пивненко Т. Н., Гажа А. К., Иванушко Л. А., Воронцов В. Н., Санина Н. М. Исследование иммуномодулирующей и мембранотропной активностей каротиноидов из туники асцидии Halocynthia aurantium // Тихоокеан. мед.ж. 2009. № 3. С. 28–32.Новгородцева Т. П., Гвозденко Т. А., Касьянов С. П., Кнышова В. В., Караман Ю. К. Использование биологически активной добавки к пище на основе липидов морских гидробионтов в эксперименте на крысах // Вопр. питания. 2010. Т. 79. № 2. С. 24–27.Пономарева Т. И. Оценка эффективности экстракта Halocynthia aurantium при экспериментальном лучевом поражении // В мире науч. открытий. 2018. Т. 10. № 4. С. 245–257. https://doi.org/10.12731/wsd-2018-4-245-257Солин А. В., Корозин В. И., Ляшев Ю. Д. Влияние регуляторных пептидов на стресс-индуцированные изменения липидного обмена у экспериментальных животных // Бюл. экспер. биол. и мед. 2013. Т. 155. № 3. С. 299–301.Спрыгин В. Г., Кушнеровва Н. Ф., Фоменко С. Е. Влияние липидного комплекса из морской красной водоросли Ahnfeltia tobuchiensis на метаболические реакции печени при экспериментальном токсическом гепатите // Изв. РАН. Сер. биол. 2022. № 1. С. 5–14. https://doi.org/10.31857/S1026347022010140Фисенко В. П. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М., 2000. 398 с.Фоменко С. Е., Кушнерова Н. Ф., Добряков Е. Ю. Влияние экстракта из туники морского гидробионта асцидии пурпурной на липидный обмен печени при остром стрессе // Экспер. и клин. фармакол. 2012. Т. 75. № 6. С. 36–39.Фоменко С. Е., Кушнерова Н. Ф., Спрыгин В. Г. Использование экстрактов бурой водоросли Sargassum pallidum для профилактики стресс-индуцированных нарушений углеводно-липидного обмена в эксперименте // Экспер. и клин. фармакол. 2019. Т. 82. № 8. С. 22–26. https://doi.org/10.30906/0869-2092-2019-82-8-22-26Явнов С. В. Атлас иглокожих и асцидий /под ред. В. А. Ракова. Владивосток: Русский Остров. 2010. 176 с.Amenta J. S. A rapid chemical method for quantification of lipids separated by thin-layer chromatography // J. Lipid Res. 1964. V. 5. № 2. Р. 270–272. https://doi.org/10.1016/S0022-2275(20)40251-2Asztalos I. B., Gleason J. A., Sever S., Gedik R., Asztalos B. F., Horvath K. V., Dansinger M. L., Lamon-Fava S., Schaefer E. J. Effects of eicosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid on cardiovascular disease risk factors: a randomized clinical trial // Metab. Clin. Exp. 2016. V. 65. № 11. P. 1636–1645. https://doi.org/10.1016/j.metabol.2016.07.010Bligh Е. G., Dyer W. J. A rapid method of total lipid extraction and purification // Canad. J. of Biochem. and Physiol. 1959. V. 37. № 8. Р. 911–917. https://doi.org/10.1139/o59-099Bullard, S. G., Davis, C. V., Shumway, S. E. Seasonal patterns of ascidian settlement at an aquaculture facility in the Damariscotte River, Maine // J. Shellfish Res. 2013. V. 32. P. 255 264. http://dx.doi.org/10.2983/035.032.0202Carreau J. P., Dubacq J. P. Adaptation of a macro-scale method to the micro-scale for fatty acid methyl transesterification of biological lipid extracts // J. Chromatogr. A. 1978. V. 151. № 3. P. 384–390. https://doi.org/10.1016/S0021-9673%2800%2988356-9Christie W. W. Equivalent chain-lengths of methyl ester derivatives of fatty acids on gas chromatography A reappraisal // J. Chromatogr. A. 1988. V. 447. P. 305–314. https://doi.org/10.1016/0021-9673(88)90040-4Folch J., Less M., Sloane-Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissue // Biol. Chem. 1957. V. 226. P. 497–509. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(18)64849-5Hoang T. H., Liang Q., Luo X., Tang Y., Jian G., Qin J. G., Zhang W. Bioactives From Marine Animals: Potential Benefits for Human Reproductive Health // Front. Mar. Sci. 2022. V. 9. № 872775. http://dx.doi.org/10.3389/fmars.2022.872775Hou Y., Vasileva E. A., Carne A., McConnell M., Bekhit A. E.A., Mishchenko N. P. Naphthoquinones of the spinochrome class: occurrence, isolation, biosynthesis and biomedical applications // RSC Adv. 2018. V. 8. P. 32637–32650. http://dx.doi.org/10.1039/C8RA04777DJang A. Y., Kim J. E., Park W. J., Monmai C., Rod-In W., You S. G., Lee T. N. Immune-modulation effect of Halocynthia aurantium tunic lipid on RAW264.7 cells // Food sci. biotechnol. 2022. V. 31. № 1. P. 101–110. http://dx.doi.org/10.1007/s10068-021-01017-4Jo J-E, Kim K-H, Yoon M-H., Kim N-Y., Lee C., Yook H-S. Quality characteristics and antioxidant activity research of Halocynthia roretzi and Halocynthia aurantium // J. Korean Soc Food Sci Nutr. 2010. V. 39. № 10. P. 1481–1486. http://dx.doi.org/10.3746/jkfn.2010.39.10.1481Klimovich A. A., Popov A. M., Styshova O. N., Artyukov A. A., Tsybulsky A. V. A comparative evaluation of the actions of different secondary metabolites of marine hydrobionts on the redox status of tumor and immune cells // Biophysics. 2018. V. 63. № 5. P. 763–768. http://dx.doi.org/10.1134/S000635091805010XKostetsky E. Y., Velansky P. V., Sanina N. M. Phospholipids of the organs and tissues of echinoderms and tunicates from peter the great bay (Sea of Japan) // Russ J Mar Biol. 2012. V. 38. № 1. P. 64–71. https://doi.org/10.1134/S1063074012010099Lee J. M., Lee H. J., Kang S. B., Park W. J. Fatty acid desaturases, polyunsaturated fatty acid regulation, and biotechnological advances // Nutrients. 2016. V. 8. № 1. Р. 23. http://dx.doi.org/10.3390/nu8010023Monmai С., Go S. H., Shin S., You S. G., Lee H., Kang S. B., Park W. J.. Immune-enhancement and anti-inflammatory activities of fatty acids extracted from Halocynthia aurantium tunic in RAW264.7 cells // Mar. Drugs. 2018. V. 16. № 9. P. 309–323. https://doi.org/10.3390/md16090309Nieto N., Fernandez M. I., Torres M. I., Rios A., Suares M. D. Dietary monounsaturated n-3 and n-6 long-chain polyunsaturated fatty acids affect cellular antioxidant defense system in rats with experimental ulcerative colitis induced by trinitrobenzene sulfonic acid // Gil. Dig. Dis. Sci. 1998. V. 43. № 12. P. 2678–2687. https://doi.org/10.1023/a:1026655311878Rouser G., Kritchevsky G.,Yamamoto A. Column chromatographic and associated procedures for separation and determination of phosphatides and glicolipids // Lipid Chromatographic Analysis. New York: Dekker, 1967. V. 1. P. 99–162.Sanina N. M., Kostetsky Ed. Y. Seasonal changes in thermotropic behavior of phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine in different organs of the ascidian Halocynthia aurantium. // Comp. Biochem. Physiol. 2001. Part B. V. 128. P. 295–305. https://doi.org/10.1016/s1096-4959(00)00328-6Sanina, N.M., Kostetsky, E.Y., Shnyrov, V.L. ,Tsybulsky, A.V., Novikova, O.D., Portniagina, O.Y., Vorobieva, N.S., Mazeika, A.N., Bogdanov, M. V. The influence of monogalactosyldiacylglycerols from different marine macrophytes on immunogenicity and conformation of pritein antigen of tubular immunostimulating complex // Biochimie. 2012. V. 94, № 4. P. 1048–1056. https://doi.org/10.1016/j.biochi.2012.01.009Svetashev V. I., Vaskovsky V. E. A simplified technique for thin layer microchromatography of lipids // J. Chromatogr. 1972. Vol. 67. № 2. P. 376–378. https://doi.org/10.1016/s0021-9673(01)91245-2Tabakaeva O. V., Tabakaev A. V. Amino acids and related compounds of the ascidian Halocynthia aurantium from the Sea of Japan // Chem. Nat. Compd. 2017. V. 53. № 4. P. 722–725. https://doi.org/10.1007/s10600-017-2099-8Vaskovsky V. E., Kostetsky E. Y. Vasendin I. M. A universal reagent for phospholipid analysis // J. Chromatogr. 1975. V. 114. № 1. P. 129–141. https://doi.org/10.1016/s0021-9673(00)85249-8Vaskovsky V. E., Terekhova T. A. HPTLC of Phospholipid Mixtures Containing Phosphatidylglycerol // J. Sep. Sci. 1979. V. 2. № 11. P. 671–672. http://dx.doi.org/10.1002/jhrc.1240021107