Исследование механизма угнетающего действия гамма-аминомасляной кислоты на процесс образования миотрубок в культуре
- Авторы: Токмакова А.Р.1, Сибгатуллина Г.В.1, Гилиждинова К.Р.2, Маломуж А.И.1,3
-
Учреждения:
- Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ Казанский научный центр РАН
- Казанский федеральный университет
- Казанский национальный исследовательский технический университет им. А.Н. Туполева – КАИ
- Выпуск: Том 40, № 5 (2023)
- Страницы: 388-395
- Раздел: СТАТЬИ
- URL: https://medjrf.com/0233-4755/article/view/667337
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0233475523050134
- EDN: https://elibrary.ru/OMGNGS
- ID: 667337
Цитировать
Аннотация
Гамма-аминомасляную кислоту (ГАМК) принято рассматривать как сигнальную молекулу в синапсах центральной нервной системы, где она играет роль основного тормозного нейромедиатора в зрелом мозге и участвует в процессе нейрогенеза. Недавно были получены данные, указывающие на то, что ГАМК может участвовать и на ранних этапах процесса развития скелетной мышечной ткани. В настоящем исследовании, выполненном на культуре миоцитов крысы, было проанализировано влияние экзогенной ГАМК на процесс слияния миоцитов в миотрубки (по анализу такого морфометрического показателя как “индекс слияния”). Добавление аминокислоты в культуру приводило к значительному концентрационно-зависимому угнетению (вплоть до полной остановки) процесса образования миотрубок. Из возможных белков, способных опосредовать влияние аминокислоты, рассматривались ГАМКА рецепторы и транспортеры ГАМК (GAT-2). Методами иммуногистохимии были получены доказательства наличия этих белков на культивируемых клетках. Блокада ГАМКА рецепторов габазином никак не сказывалась на индексе слияния, и ГАМК в его присутствии продолжала оказывать свое угнетающее действие. Ингибирование ГАМК транспортеров нипекотиковой кислотой само по себе снижало индекс слияния миоцитов, однако на фоне действия блокатора транспортеров собственный эффект ГАМК уже отсутствовал. Полученные данные согласуются с высказанной гипотезой об участии аминокислоты ГАМК на ранних этапах развития скелетной мускулатуры и предполагают, что угнетающий эффект экзогенной аминокислоты может быть обусловлен увеличением ее концентрации в саркоплазме, поскольку и добавление блокатора ГАМК транспортеров и повышение внеклеточной концентрации ГАМК негативно сказываются на образовании миотрубок.
Об авторах
А. Р. Токмакова
Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ Казанский научный центр РАН
Email: artur57@list.ru
Россия, 420111, Казань
Г. В. Сибгатуллина
Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ Казанский научный центр РАН
Email: artur57@list.ru
Россия, 420111, Казань
К. Р. Гилиждинова
Казанский федеральный университет
Email: artur57@list.ru
Россия, 420008, Казань
А. И. Маломуж
Казанский институт биохимии и биофизики ФИЦ Казанский научный центр РАН; Казанский национальный исследовательский технический университетим. А.Н. Туполева – КАИ
Автор, ответственный за переписку.
Email: artur57@list.ru
Россия, 420111, Казань; Россия, 420111, Казань
Список литературы
- Abmayr S.M., Pavlath G.K. 2012. Myoblast fusion: Lessons from flies and mice. Development. 139 (4), 641–656. https://doi.org/10.1242/dev.068353
- Murphy M., Kardon G. 2011. Origin of vertebrate limb muscle: The role of progenitor and myoblast populations. Curr. Top. Dev. Biol. 96, 1–32. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-385940-2.00001-2
- Watanabe M., Maemura K., Kanbara K., Tamayama T., Hayasaki H. 2002. GABA and GABA receptors in the central nervous system and other organs. Int. Rev. Cytol. 213, 1–47. https://doi.org/10.1016/s0074-7696(02)13011-7
- Sibgatullina G.V., Malomouzh A.I. 2020. GABA in developing rat skeletal muscle and motor neurons. Protoplasma. 257 (3), 1009–1015. https://doi.org/10.1007/s00709-020-01485-1
- Sibgatullina G., Al Ebrahim R., Gilizhdinova K., Tokmakova A., Malomouzh A. 2023. Differentiation of myoblasts in culture: Focus on serum and GABA. Cells Tissues Organs. (In press). https://doi.org/10.1159/000529839
- Das M., Rumsey J.W., Bhargava N., Stancescu M., Hickman J.J. 2010. A defined long-term in vitro tissue engineered model of neuromuscular junctions. Biomaterials. 31 (18), 4880–4888. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2010.02.055
- Baccam A., Benoni-Sviercovich A., Rocchi M., Moresi V., Seelaender M., Li Z., Adamo S., Xue Z., Coletti D. 2019. The mechanical stimulation of myotubes counteracts the effects of tumor-derived factors through the modulation of the activin/follistatin ratio. Front. Physiol. 10: 401. https://doi.org/10.3389/fphys.2019.00401
- Wu C., Sun D. 2015. GABA receptors in brain development, function, and injury. Metab. Brain. Dis. 30 (2), 367–379. https://doi.org/10.1007/s11011-014-9560-1
- Zhou Y., Danbolt N.C. 2013. GABA and glutamate transporters in brain. Front. Endocrinol (Lausanne). 4, 165. https://doi.org/10.3389/fendo.2013.00165
- Borodinsky L.N., Spitzer N.C. 2007. Activity-dependent neurotransmitter-receptor matching at the neuromuscular junction. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 104 (1), 335–340. https://doi.org/10.1073/pnas.0607450104
- Nurullin L.F., Nikolsky E.E., Malomouzh A.I. 2018. Elements of molecular machinery of GABAergic signaling in the vertebrate cholinergic neuromuscular junction. Acta. Histochem. 120 (3), 298–301. https://doi.org/10.1016/j.acthis.2018.02.003
- Bai D., Zhu G., Pennefather P., Jackson M.F., MacDonald J.F., Orser B.A. 2001. Distinct functional and pharmacological properties of tonic and quantal inhibitory postsynaptic currents mediated by gamma-aminobutyric acid(A) receptors in hippocampal neurons. Mol. Pharmacol. 59 (4), 814–824. https://doi.org/10.1124/mol.59.4.814
- Moldavan M., Cravetchi O., Allen C.N. 2017. GABA transporters regulate tonic and synaptic GABAA receptor-mediated currents in the suprachiasmatic nucleus neurons. J. Neurophysiol. 118 (6), 3092–3106. https://doi.org/10.1152/jn.00194.2017
- Bowery N.G., Bettler B., Froestl W., Gallagher J.P., Marshall F., Raiteri M., Bonner T.I., Enna S.J. 2002. International Union of Pharmacology. XXXIII. Mammalian gamma-aminobutyric acid(B) receptors: Structure and function. Pharmacol. Rev. 54, 247–264. https://doi.org/10.1124/pr.54.2.247
- Olsen R.W., Sieghart W., 2008. International union of pharmacology. LXX. Subtypes of gamma-aminobutyric acid(A) receptors: Classification on the basis of subunit composition, pharmacology, and function. Update. Pharmacol. Rev. 60, 243–260. https://doi.org/10.1124/pr.108.00505
- Naffaa M.M., Hung S., Chebib M., Johnston G.A.R., Hanrahan J.R., 2017. GABA-ρ receptors: Distinctive functions and molecular pharmacology. Br. J. Pharmacol. 174 (13), 1881–1894. https://doi.org/10.1111/bph.13768
- Behar T.N., Schaffner A.E., Scott C.A., Greene C.L., Barker J.L., 2000. GABA receptor antagonists modulate postmitotic cell migration in slice cultures of embryonic rat cortex. Cereb. Cortex. 10, 899–909. https://doi.org/10.1093/cercor/10.9.899
- Kleinrok Z., Matuszek M., Jesipowicz J., Matuszek B., Opolski A., Radzikowski C., 1998. GABA content and GAD activity in colon tumors taken from patients with colon cancer or from xenografted human colon cancer cells growing as s.c. tumors in athymic nu/nu mice. J. Physiol. Pharmacol. 49, 303–310.
- Moss F.J., Imoukhuede P.I., Scott K., Hu J., Jankowsky J.L., Quick M.W., Lester H.A., 2009. GABA transporter function, oligomerization state, and anchoring: Correlates with subcellularly resolved FRET. J. Gen. Physiol. 134 (6), 489–521. https://doi.org/10.1085/jgp.200910314
- Kardos J., Dobolyi Á., Szabó Z., Simon Á., Lourmet G., Palkovits M., Héja L. 2019. Molecular plasticity of the nucleus accumbens revisited—astrocytic waves shall rise. Mol. Neurobiol. 56, 7950–7965. https://doi.org/10.1007/s12035-019-1641-z
- Ben-Ari Y., Khalilov I., Kahle K.T., Cherubini E., 2012. The GABA excitatory/inhibitory shift in brain maturation and neurological disorders. Neuroscientist. 18 (5), 467–486. https://doi.org/10.1177/1073858412438697
- Attwell D., Barbour B., Szatkowski M., 1993. Nonvesicular release of neurotransmitter. Neuron. 11 (3), 401–407. https://doi.org/10.1016/0896-6273(93)90145-h
- Levi G., Raiteri M., 1993. Carrier-mediated release of neurotransmitters. Trends Neurosci. 16 (10), 415–419. https://doi.org/10.1016/0166-2236(93)90010-j
- Pin J.P., Bockaert J., 1989. Two distinct mechanisms, differentially affected by excitatory amino acids, trigger GABA release from fetal mouse striatal neurons in primary culture. J. Neurosci. 9 (2), 648–656. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.09-02-00648.1989
- Wu Y., Wang W., Richerson G.B. 2001. GABA transaminase inhibition induces spontaneous and enhances depolarization-evoked GABA efflux via reversal of the GABA transporter. J. Neurosci. 21 (8), 2630–2639. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.21-08-02630.2001
- Héja L., Simon Á., Szabó Z., Kardos J. 2019. Feedback adaptation of synaptic excitability via Glu: Na+ symport driven astrocytic GABA and Gln release. Neuropharmacology. 161, 107629. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2019.05.006
- Conti F., Minelli A., Melone M., 2004. GABA transporters in the mammalian cerebral cortex: Localization, development and pathological implications. Brain Res. Brain Rew. 45 (3), 196–212. https://doi.org/10.1016/j.brainresrev.2004.03.003
Дополнительные файлы
